黄瓜绿斑驳花叶病毒
简介学名 Cucumber green mottle mosaic virus
黄瓜绿斑驳花叶病毒
异名 Cucunber virus 3, Cucumis virus 2
英文名 Cucumber green mottle mosaic virus
分类地位 由Ainsworth (1935)首次记述. 在欧洲, 印度, 和日本葫芦科植物上发现的一种RNA病毒，病毒粒子细管状长度约300×18 nm. 病毒易通过汁液传播，但病毒的寄主范围较窄，可通过树叶的接触，植物栽培中的操作，土壤及黄瓜种子传毒。
分布欧洲、印度和日本
寄主植物自然界寄主：
黄瓜，西瓜和甜瓜(Cucumis melo)作物，不能侵染西葫芦(Cucurbita pepo)，在葫芦(Lagenaria siceraria)上也有发现。
大多数英国株系只侵染葫芦科植物(Cucurbitaceae)；日本和印度的有些株系和英国分离的一个株系能在苋色藜(Chenopodium amaranticolor)和/或曼陀罗（Datura stramonium）上产生局部枯斑(Komuro et al., 1971; Tochihara & Komuro, 1974)。东欧的桃叶珊瑚分离物能够在三生烟，珊西烟(Brcák et al., 1962)上产生局部褪绿斑，在昆藜上产生系统斑纹。
鉴别寄主：
没有特别的鉴别寄主，对于某些株系鉴定来说，血清学测试和电镜观察是必需的。
黄瓜（Cucumis sativus）－抗病。无局部症状；接种2星期后产生轻微的明脉，继而出现明亮绿黑色斑纹，水泡，叶片畸形（特别是在冬天），植株矮化。
苋色藜（Chenopodium amaranticolor）－经西瓜株系、Yodo株系和印度C株系(Tochihara & Komuro, 1974)侵染后出现细小局部坏死斑，而欧洲黄瓜株系不出现这种症状；无系统侵染。
曼陀罗（Datura stramonium）－Yodo株系和日本的黄瓜株系在接种后1星期产生能扩散的局部褪绿斑；无系统侵染。
毒源繁殖保存寄主：
黄瓜是病毒繁殖与保存的优良寄主，但毒源最好是-20℃叶片冻存或汁液冻存。
测定寄主：
对大多数株系来说没有非常满意的测定寄主，但对于日本黄瓜株系来说，曼陀罗（Datura stramonium）是最好的鉴别寄主；苋色藜可以作为日本Yodo株系与西瓜株系及印度C株系的测定寄主(Tochihara & Komuro, 1974)。
株系：
有些株系可以用血清学方法或在苋色藜（C. amaranticolor）和曼陀罗（D. stramonium）上的症状反应来区分(Tochihara & Komuro, 1974)。
主要株系：
典型株系(Ainsworth, 1935)－黄瓜绿色斑驳花叶病毒（Cucumber green mottle mosaic virus），在欧洲和英国报道，在果实上不出现症状，某些条件下在苋色藜上出现一些枯斑；不侵染曼陀罗（Datura stramonium）和矮牵牛（Petunia hybrida）。
黄瓜桃叶珊瑚花叶病毒（Cucunber aucuba mosaic virus）(Bewley, 1923)－＝Cucumber virus 4(Ainsworth, 1935) = Cucumis virus 2A (Smith, 1957).在英国和欧洲报道，印度也有类似报道(Vasudeva et al., 1949)。在果实上诱发显症，苋色藜上出现局部枯斑，但不在曼陀罗（Datura stramonium）上引发枯斑。
西瓜株系（Watermelon strain）－在日本报道(Komuro et al., 1971)。苋色藜上出现局部枯斑，但不在曼陀罗（Datura stramonium）上引发枯斑。
日本黄瓜株系（Japanese cucumber strain）－在日本报道(Komuro et al., 1971)。在黄瓜上导致严重的果实变形，在曼陀罗（Datura stramonium）引发局部枯斑，但在苋色藜（C. amaranticolor）不引发局部枯斑。
Yodo株系（Yodo strain）－在日本Yodo报道(Kitani et al., 1970; Tochihara & Komuro, 1974).，在黄瓜上导致果实扭曲，在苋色藜，曼陀罗和矮牵牛（Petunia hybrida）上产生局部枯斑。
印度C株系（Indian strain C）－在印度bottlegourd中分离(Vasudeva et al., 1949)，产生水泡状色斑，矮缩及减产；在苋色藜C. amaranticolor上引发局部枯斑，曼陀罗D. stramonium上为隐症，不侵染烟草和矮牵牛（Petunia hybrida）。
危害情况在黄瓜(Cucumis sativus)上产生的典型症状为叶片上出现色斑，水泡及变形，植株矮化，产量损失达15%(Fletcher et al., 1969)；受感染的果实通常没有症状，但有些株系能够使果实导致严重的色斑和变形 (Inouye et al., 1967a)，有些亚洲株系在叶片上并不出现症状但是却能造成产量下降(Smith, 1957).。
桃叶珊瑚花叶病毒侵染黄瓜产生叶片亮黄斑驳，新叶微有变形和矮化；果实出现黄化或出现银白色的条纹斑，特别是在高温下容易出现这种症状(Komuro et al., 1971)。
在西瓜上(Citrullus vulgaris)叶片只产生轻微的斑纹和矮化，但在果实中却造成严重的变色或使果实内部造成腐烂。
形态特征病毒粒子特性：
沉淀系数(s°20,w)：185 S，195 S (Brcák et al., 1962) ；
等电点：pH：4.98(Oster, 1951; Brcák et al., 1962)；
A260/A280: 1.38. Amax(260)/Amin(249): 1.05. (Values corrected for light-scattering; M. Hollings, unpublished data).
病毒粒子结构：
直形棒状，300×18nm，一个螺旋23?，半径20 ?，RNA位于距中心40 ?处，一个螺旋由49个亚单位或3个转角组成(Holmes & Franklin, 1958)。
病毒粒子组成：
核酸：
单链线性RNA，基因组长度6.5kb，基因组为单一组分，碱基比：G：A：C：U=25:26:19:30(Linnasalmi & Toiviainen, 1974), 占粒子重的6%(Knight, 1954)。基因组不带Poly（A）尾巴，而具有tRNA-like结构。
GenBank登录号：
D12505 Em(40)_vi:MCGSHCG Gb(84)_vi:MCGSHCG 黄瓜绿斑驳花叶病毒(CGMMV) 全长基因组. 10/92 6,421bp.
J02054 Gb(84)_vi:MCGCPW 黄瓜绿斑驳花叶病毒外壳蛋白基因. 9/83 1,071bp.
J04322 Em(40)_vi:TOBMCG30 Gb(84)_vi:MCG30KP 黄瓜绿斑驳花叶病毒30K蛋白全长基因,180K 蛋白和外壳蛋白基因3个序列.
蛋白：
占粒子重的94%，三个黄瓜分离物，每个都含有15个氨基酸，平均160个残基/亚单位，分子量17.2kDa(Linnasalmi & Toiviainen, 1974)，三个欧洲的黄瓜分离物的氨基酸组成与西瓜分离物(Nozu et al., 1971)及CV-4分离物（桃叶珊瑚花叶病毒）(van Regenmortel, 1967)很相似，而黄瓜桃叶珊瑚花叶分离物与以上分离物的氨基酸组成有些差异（Tung & Knight ,1972； Linnasalmi & Toiviainen , 1974).
生物学血清学及亲缘关系：
病毒具有很强的抗原性。与其他烟草花叶病毒属（tobamovirus）出现的症状形态学上类似，血清学上也相关。西瓜株系与英国的两个株系及印度的C株系有较近的亲缘关系，但与日本的黄瓜株系、Yodo株系及烟草花叶病毒却有较远的亲缘关系，而与番茄花叶病毒及烟草花叶病毒属的其他成员的亲缘关系更远(Nozu et al., 1971; Tochihara & Komuro, 1974; van Regenmortel, 1975; M. Hollings, unpublished data).。日本黄瓜株系与Yodo株系的亲缘关系很近。
汁液稳定性：
所有株系都是极端稳定的。典型株系90℃处理10min失去侵染能力 (Smith, 1957)，黄瓜株系与yodo株系的致死温度为90-100℃(Kitani et al., 1970; Nagai et al., 1974),印度C株系为86-88℃(Vasudeva et al., 1949)。病毒汁液稀释限点为10-6-10-7(Nagai et al., 1974).,常温下病毒侵染力可保持数月，在0℃可保持数年。
传播途径介体传播：
桃蚜（Myzus persicae）和棉蚜（Aphis gossypi）i(Inouye et al., 1967a), 或黄瓜叶片甲虫不传毒(Nagai et al., 1974)，带病残留物可经土壤传播至根部(Inouye et al., 1967b; Nagai et al., 1974)，但可以通过溴化甲烷对土壤进行熏蒸而防止病毒的侵染(Inouye et al., 1967c)；植物之间的接触能进行传毒。
种传：
在黄瓜上，种子丰收后一个月种子传毒效率为8%，保存5个月则下降至1%seed (van Koot & van Dorst, 1959)。种传也出现在bottlegourd中，在西瓜中高达5%，虽然病毒在种子中不能检测到(Komuro et al., 1971; Nagai et al., 1974)。种子污染大多是外部因素引起的，并可以通过干热处理（70℃处理3天）减轻种子传毒而不影响种子的发芽率(Fletcher et al., 1969; Nagai et al., 1974)。
菟丝子传：
黄瓜绿色斑驳花叶病毒可以经Cuscuta subinclusa, 啤酒花菟丝子（C. lupuliformis）和C. campestris传毒(Schmelzer, 1956),，黄瓜桃叶珊瑚花叶病毒可经C. campestris传毒(Johnson, 1941).[1]
检疫与防治细胞病理学特征：
病毒存在于所有组织中，包括花粉，偶尔在种子中也能发现，在黄瓜绿色斑驳花叶病毒的侵染后细胞学上产生畸形，包括线粒体的囊泡化(Hatta et al., 1971;
关于此病毒防控的会议
Hatta & Ushiyama, 1973)。
对于是否存在胞内内含体还有争议，Bawden & Sheffield (1939) 报道在green mottle mosaic 或 aucuba mosaic strains侵染的黄瓜细胞中不具内含体，而Brcák & Hrsel (1961)发现aucuba mosaic strains侵染的细胞中发现类似于烟草花叶病毒典型株系产生的内含体，Milicic (1969)也报道green mottle mosaic strain侵染细胞中发现圆盘状内含体[2]。